小鼠肌球蛋白轻链激酶(MLCK/MYLK)ELISA试剂盒

酶联吸附实验 (ELISA) 是一种定性或定量检测,使用抗体来结合并测定目的分子。与其他检测相似,可使用单克隆抗体和多克隆抗体来检测分析物(如肽、蛋白、抗体和小分子)。抗体对分析物产生特异性,并且一部分(如辣根过氧化物酶 [HRP])直接或间接偶联抗体,从而提供检测方法并实现可能的信号放大。通过多种ELISA方法和检测化学成份,可以让终端用户调整适当的检测,以解决预计的实验问题。该方法可以用于单份样品检测或高通量筛选。

小鼠肌球蛋白轻链激酶(MLCK/MYLK) ELISA 试剂盒

直接 ELISA

在直接 ELISA 中,抗原直接结合微孔板表面,随后添加直接偶联的抗体来结合/检测。简而言之,实验步骤的 步便是将抗原固定在微孔板上。 步是添加一种封闭试剂,防止检测抗体出现非特异性结合。接下来,添加直接偶联某种酶(如 HRP)的检测抗体。该检测抗体将结合抗原,并且剩余的抗体会从孔中洗掉。随后添加这种酶的底物,短暂孵育后,通常在一个读板机上测定每个孔的信号。直接 ELISA 的实验步骤有限,可让实验设置整体简化。

直接法优缺点:

优点:1:快速,仅使用一种抗体且步骤较少;2:消除了 抗体的交叉反应性。

缺点:1:一抗的反应性可能受到酶或标签标记的不利影响;2:为每个特定的ELISA系统标记一抗,既费时又昂贵;3:由于标记的抗体密度较低导致较低的灵敏度;4:抗原的固定化不是特异性的,有较高背景干扰。

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间接 ELISA

间接 ELISA 类似于直接 ELISA;但主要的差别在于会通过 偶联抗体来检测结合抗体。实验步骤的 步便是将抗原固定在微孔板上。 步是添加一种封闭试剂,防止结合抗体出现非特异性结合。第三,添加一种抗原特异性结合抗体,短暂孵育后,用缓冲液洗涤板孔,以去除多余的试剂。下一步是“间接”检测,其中添加一种抗体来检测 结合抗体。这种抗体通常偶联某种酶。在孵育和洗涤板孔之后,添加该酶的底物。随后,短暂孵育后,通常在一个读板机上测定每个孔的信号。 抗体通常是一种抗物种抗体。间接 ELISA 的主要优势在于可以使用偶联的 抗体来进行多个实验,前提是在所有不同的实验中使用相同物种的结合抗体。另一个优势是 抗体会放大信号,因为大约 2 个抗体将结合 抗体。随着步骤数量的增加,实验步骤通常会耗时更长,并且更容易出错。此外,背景信号可能会增强,因为所需的试剂数量更多,每一种都可能会出现非特异性结合。

间接法优缺点:

优点:1:可以在一个物种中制备许多一抗,并且可以将相同的标记二抗用于检测;2:由于没有标记,保留了 抗体的 反应性;3:高标记的二抗密度可实现高灵敏度,从而导致信号放大。

缺点:1:二抗可能会发生交叉反应,从而导致非特异性信号;2:这个过程中需要一个额外的孵育步骤

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竞争性ELISA

竞争性/抑制性 ELISA 也称封闭 ELISA,它对干扰预计信号的程度进行定量,以测定分析物的数量。这样做的一个方法是用一种对靶标有特异性的抗体包被平板。靶标可以偶联某种酶,并用于检测。如果实验含有次于 量的检测靶标,则高浓度的未标记靶标会竞争性地结合,从而减弱信号。这类竞争性实验可用来测定某种特异性分析物的水平。

竞争法优缺点:

优点:1:灵敏度高以及灵活性高;2:能测定微量的分析物。

缺点:1:特异性较低;2:需要酶标记的抗原。

<p font-size:14px;"="" style="padding: 0px;margin-top: 0px;margin-bottom: 0px;list-style: none;font-family: 'Microsoft YaHei';font-size: 14px;white-space: normal">标记方法
良好的酶结合物取决于两个条件:即价的抗体和高活性的酶。抗体的活性和纯度对制备标记抗体至关重要,因为特异性反应随抗体活性和纯度的增加而增强。在酶标记过程中,抗体的活性有所降低,故需要纯度高、效及抗原亲和力强的抗体球蛋白, 使用亲和层析提纯的抗体,可提高敏感性,而且可稀释使用,减少非特异性吸附。
酶与抗体交联,常用戊二醛法和过碘酸盐氧化法。郭春祥建立的HRP标记抗体的改良过碘酸钠法简单易行,标记效果好,特别适用于实验室的小批量制备。其标记程序为:将5μg HRP溶于0.5ml蒸馏水中,加入新鲜配制的0.06 mol/L的过碘酸钠(NaIO4)水溶液0.5ml,混匀置4℃冰箱30分钟 , 取出加入0.16mol/L的乙二醇水溶液0.5ml,室温放置30分钟后加入含5g纯化抗体的水溶液1ml,混匀并装透析袋,以0.05mol/L、pH9.5的碳酸盐缓冲液于4℃冰箱中慢慢搅拌透析6小时(或过夜)使之结合,然后吸出,加硼氢化钠(NaBH4)溶液(5(g/ml)0.2ml,置4℃冰箱2小时,将上述结合物混合液加入等体积饱和硫酸铵溶液,置4℃冰箱30分钟后离心,将所得沉淀物溶于少许0.02mol/L、pH7.4PBS中,并对之透析过夜(4℃),次日离心除去不溶物,即得到酶标抗体,用0.02mol/L、pH7.4PBS稀至5ml,进行测定后,冷冻干燥或低温保存。
效果测定
测定内容包括酶和抗体活性、结合物中酶含量和IgG含量、酶与IgG摩尔比值以及结合率。
⑴ 酶与抗体的活性 常用琼脂扩散或电泳法,使抗原与抗体形成沉淀线,经PBS漂洗1天,再以蒸馏水浸泡1小时,将琼脂凝胶片浸于酶底物溶液中着色,如果出现应有的颜色反应,再用生理盐水浸泡,颜色仍然不褪,表示结合物既有酶的活性,也有抗体活性。良好的结合物在显色后,琼扩滴度应在1:16以上。另一个测定方法是用系列稀释的酶标抗体直接以ELISA方法进行方阵滴定,此法不仅可以测定标记效果,还可以确定酶标抗体的使用浓度。
⑵ 结合物的定量测定 一般是对结合物中的酶和IgG进行定量测定。常用紫外分光光度计于403nm和280nm进行测定,然后按下列公式计算:
酶量(mg/ml)=OD403×0.42
IgG量(mg/ml)=(OD280-OD403×0.4)×0.94×0.62
对于过碘酸钠氧化法制备的标记抗体量,按下列公式计算:
IgG量(mg/ml)=(OD280-OD403×0.34)×0.62
已知酶量和IgG量后,即可计算出标记抗体的摩尔(mol)比值。
HRP/IgG摩尔比值=HRP(mg/ml)/IgG(mg/ml)×4
结合物中酶总量=HRP(mg/ml)×结合物溶液量
结合物产率=结合物中酶总量/标记时加入的酶量×
用于ELISA的结合物的酶量为400(g/ml时效果一般,为500(g/ml时效果较好,达 1000(g/ml时效果 。mol.比值由于结合物中含的IgG并不完全可靠,所以不能作为主要参数。一般认为mol.比值为0.7时效果一般,1.0时效果较好,1.5-2.0时 。酶结合率为 7%时效果一般,为9%-10%较好,达30%以上时 。
ELISA方法的基本类型、用途及操作程序
根据ELISA所用的固相载体而区分为三大类型:一是采用聚苯乙烯微量板为载体的ELISA,即我们通常所指的ELISA(微量板ELISA);另一类是用硝酸纤维膜为载体的ELISA,称为斑点ELISA(Dot-ELISA);再一类是采用疏水性聚脂布作为载体的ELISA,称为布ELISA(C-ELISA)。在微量板ELISA中,又根据其性质不同分为间接ELISA、双抗体夹心ELISA、双夹心ELISA、竞争ELISA、阻断ELISA及抗体捕捉ELISA。